蛋白质印迹的基本原理和操作步骤
westernblot实验步骤？
westernblot实验步骤？
Western，也叫 Western blot, Western blot blot, Western印迹法，是检测蛋白质抗体的重要方法之一。
实验步骤：
1.用块称量。
2.用液氮，将组织块粉碎。
3.加入 RIPA缓冲剂(每克组织3 ml RIPA)、 PMSF (每克组织30μ l,10 mg/ml PMSF)，继续保持4℃的 Polytron (每克组织3 ml RIPA)。
4. PMSF (每克组织30μ l,10 mg/ml PMSF)，冰上孵化30分钟。
5.移入离心管，4℃大约20,000 g (15,000转)。
6.将上清作为细胞裂解液，分装-20℃保存。
7.蛋白质浓度测定采用 Bradford比色法。
8.取相同质量的细胞裂解液(体积*蛋白质浓度)，加2×电泳加样缓冲液。
9.用开水浴3分钟。
10.上样。
11.电泳(浓缩胶20 mA，分离胶35 mA)。
12.转膜仪转膜(100 mA 40分钟)。
13.薄膜为丽春红染色，胶用考马斯亮蓝染色。
14.显色 Westernblot试剂盒。
15.比较记录分析。
印迹法Southernblot的基本原理是？
Southern 印记杂交是指DNA与DNA的杂交。Northern 印记杂交是检测RNA的杂交。Western blotting 又称为蛋白质印记或免疫印记。 blotting为印记。
磷酸鉴定原理？
1.激酶活性分析。生物学样品中的激酶活性通常是在体外测定的，在ATP的存在下将免疫沉淀的激酶与外源底物共同孵育。之后通过一些报告系统来评估特定激酶对底物的磷酸化，包括显色、放射性或荧光检测。
直接测定蛋白磷酸化的一种经典方法是将整个细胞与放射性标记的32P-磷酸盐共同孵育，获得细胞提取物，通过SDS-PAGE分离，并曝光在胶片上。这种繁琐的方法需要多次几小时的孵育，且使用放射性同位素。其他传统方法包括2D凝胶电泳，这种技术假定磷酸化会改变蛋白的迁移率和等电点。
2.WesternBlot。利用SDS-PAGE分离生物样品，随后转移到膜上（通常是PVDF或尼龙膜），之后利用磷酸化特异的抗体来鉴定目的蛋白。
由于测得的磷酸化蛋白水平可能随处理或凝胶上样误差而变化，研究人员常常利用一个抗体来检测同源蛋白的总水平（而不考虑磷酸化状态），以确定磷酸化组分相对于总组分的比例，并充当上样内对照。化学发光和显色法都很常用，而分子量marker常用来提供蛋白分子量的信息。
3.酶联免疫吸附分析（ELISA）。ELISA的定量能力优于Westernblot，且在调节激酶活性和功能的研究中表现出巨大的作用。这种微孔板形式的分析一般利用目的蛋白特异的捕获抗体，与磷酸化状态无关。随后让目的蛋白结合在抗体包被的分析板中，目的蛋白可以是纯的，也可以是复杂的异质样品（如细胞裂解液）中的一个组分。加入待分析的磷酸化位点特异的检测抗体。这些分析通常设计为显色或荧光检测。
4.基于细胞的ELISA。来自目的蛋白的信号可通过第二种蛋白来标准化，校正各孔之间的差异，实现磷酸化蛋白水平的准确评估，并比较多个样品，与传统免疫印迹中使用磷酸化特异和总蛋白抗体相似。这些分析绕过了制备细胞裂解液的需要，因此更适合高通量分析。
5.质谱。首先，磷酸化肽段的信号通常较弱，因为它们带负电荷，而电喷雾质谱在正电模式下作用，因此电离效果不好。其次，在大量非磷酸化蛋白的高背景之下，很难观察到低丰度目的蛋白的信号。